植物与生物组织稳定同位素分析送样指南
植物与生物组织的碳氮同位素（δ¹³C、δ¹⁵N）是研究食物网营养级结构、碳氮循环、光合途径与水分利用效率的经典指标。 这类样品结果对采后保鲜、干燥方式与是否需要脂类处理较为敏感。本文汇总核素科技实验室对植物组织、 动物/生物组织及全硫（δ³⁴S）等项目的送样要求，并说明面向研究设计的前处理原理。
本实验室送样要求
| 项目 | 最小送样量 | 样品状态 | 关键要求 |
|---|---|---|---|
| 植物组织 δ¹³C、δ¹⁵N（叶/茎/根/种子） | ≥0.5 g 干样（低氮组织建议加量） | 洗净、烘干或冷冻干燥、研磨过筛 | 去除附着土壤与表面污染；根系需充分洗净 |
| 动物/生物组织 δ¹³C、δ¹⁵N（食物网） | 视组织而定，一般干样 ≥0.5 g | 采后冷冻/冰上暂存，尽快干燥研磨 | 高脂组织需评估脂类处理方案（见下） |
| 全硫 δ³⁴S（植物/组织） | 按硫含量计，硫 ≥5 mg | 烘干、研磨 | 不酸化；低硫样品需加量，可先联系核算 |
通用说明：组织样品经 60 ℃ 烘干（一般 48 小时以上）或冷冻干燥后，研磨至均匀细粉（一般过 100 目）， 装入密封袋或样品瓶，清晰标注编号并附样品信息表。高通量碳氮联测可一次进样同时给出 δ¹³C、δ¹⁵N 与 C%、N%（即 C:N）， 便于食物网与养分研究。若目标指标含量偏低、基质特殊或涉及血液/尿液等特殊生物基质，请送样前与实验室沟通确认取样量与前处理方案。
采后处理与前处理原理（面向研究设计）
以下为同位素生态学中的通用机理，具体到某一项目的最优前处理请以与实验室确认为准。
- 采后尽快保鲜与干燥：组织在空气中放置发生腐解，会难以预测地改变 δ¹³C、δ¹⁵N 与 C:N（改变方向随组织类型而异），影响结果的可比性。 采集后应冷冻或冰上暂存，并尽快干燥（60 ℃ 烘干或冷冻干燥），避免长时间常温放置。
- 脂类对 δ¹³C 的系统性影响：脂类相对蛋白质、碳水化合物明显贫 ¹³C（δ¹³C 更负）， 组织间脂含量差异会系统性地压低 δ¹³C 并干扰食性/营养级解读。常用两种处理：①化学脂类提取，②基于 C:N 比的数学归一化（C:N 是脂含量的良好代用指标）； 两者对校正 δ¹³C 的效果总体相当（具体差异随物种与组织而异）。需注意化学脂类提取可能改变部分样品的 δ¹⁵N， 故若采用化学提取，建议 δ¹⁵N 使用未提取的样品测定。高通量碳氮联测给出的 C:N 可直接用于归一化判断。
- 酸化仅在含碳酸盐时使用，且与 δ¹⁵N 分开：纯陆生植物与动物软组织通常无需酸化； 若样品含碳酸盐（钙化结构、贝壳、或混入的土壤碳酸盐），碳酸盐会使 δ¹³C 偏正，测有机质 δ¹³C 前需去除； 而酸化本身会改变 δ¹⁵N 并伴随可溶性氮与有机质的溶脱（对初级生产者尤为明显），也不适用于 δ³⁴S。因此规范做法是 δ¹³C 用酸化样、δ¹⁵N 用未酸化样分别测定， 酸化时用量宜少、不额外漂洗。能用物理方法剔除钙化结构的应优先物理去除。
- 氮是限制因素、需充分均质：组织中氮含量通常低于碳，低氮的植物组织（如木质化的茎、干）所需样量大于富蛋白的动物组织； 样品须研磨为均匀细粉以保证取样代表性，δ¹⁵N 所需样量通常大于 δ¹³C。
- 食物网研究要保持前处理一致：同一研究内不同营养级、不同物种的样品应采用一致的干燥、脂类与酸化处理， 否则各样品的 δ¹³C、δ¹⁵N 之间不可比，会传导为营养级与混合模型的偏差。